Caractéristiques transsudatives et exsudatives de la physiologie pathologique. Etude des exsudats et des transsudats

Dans un corps sain, il y a une petite quantité de liquide dans les cavités séreuses, dont on observe une augmentation au cours des processus pathologiques. Les fluides exsudatifs sont divisés en transsudats et exsudats, dont la principale différence (fondamentale) est que les premiers sont formés sans implication des membranes séreuses dans le processus pathologique, et les seconds avec implication.

Le transsudat est un liquide qui s'accumule dans les cavités séreuses du corps en raison de l'influence de facteurs systémiques sur la formation et la résorption de liquide, ou plutôt en raison d'une violation de la pression hydrostatique (dans le contexte d'une augmentation de la pression vasculaire perméabilité en violation de la circulation sanguine générale et locale) et de la pression osmotique colloïde (due à une hypoprotéinémie et / ou à des troubles électrolytiques) dans le sang, la lymphe et les cavités séreuses. Le plus souvent, le transsudat se forme dans les processus pathologiques suivants:

Augmentation de la pression veineuse en cas d'insuffisance cardiovasculaire, de maladie rénale, de cirrhose du foie (hypertension portale);
augmentation de la perméabilité des vaisseaux capillaires causée par diverses toxines, fièvre et malnutrition;
une diminution de la concentration de protéines dans le sérum sanguin (ce qui entraîne une diminution de la pression osmotique colloïde, entraînant la formation d'œdèmes et de transsudats);
blocage des vaisseaux lymphatiques (conduit à la formation de transsudats chyleux).

L'exsudat est un liquide formé à la suite de lésions des membranes séreuses, le plus souvent en raison d'une augmentation de la perméabilité de celles qui s'y trouvent (généralement dans le contexte d'un processus inflammatoire), ainsi qu'en violation de l'écoulement lymphatique de la cavité séreuse.

L'obtention de fluides d'épanchement (pour la formulation correcte d'un diagnostic clinique et l'évaluation de la situation clinique) est réalisée par ponction des cavités séreuses dans un hôpital par du personnel médical spécialement formé. L'épanchement est recueilli dans une boîte propre et, si nécessaire, stérile. Si une grande quantité d'épanchement est obtenue, une partie de l'épanchement est livrée au laboratoire, mais la dernière partie est nécessaire, car c'est la plus riche en éléments cellulaires. Des anticoagulants (citrate de sodium, EDTA) peuvent être utilisés pour prévenir la coagulation de l'épanchement, qui entraîne une déplétion des éléments cellulaires. L'utilisation de l'héparine comme anticoagulant doit être évitée, car elle entraîne une modification de la morphologie et la destruction des éléments cellulaires. Lors d'une étude en laboratoire de l'épanchement, la question de savoir si l'épanchement appartient à un transsudat ou à un exsudat est résolue. Celui-ci évalue les propriétés physiques, chimiques et microscopiques de l'épanchement.

Les exsudats et les transsudats ont souvent des densités relatives différentes, qui sont mesurées à l'aide d'un hydromètre (uromètre). Il a été constaté que le transsudat a une densité de 1,005 à 1,015 g/ml et que l'exsudat est supérieur à 1,018 g/ml. Dans le transsudat et l'exsudat, il existe différentes concentrations de protéines totales, qui sont déterminées à l'aide de la méthode utilisant une solution à 3% d'acide sulfosalicylique. La concentration en protéines étant généralement assez élevée, il est recommandé de pré-diluer l'épanchement cent fois. Le transsudat contient des protéines à une concentration de 5 à 25 g/l. Dans l'exsudat, la concentration en protéines est généralement supérieure à 30 g/L.

Aussi dans l'exsudat et transsudat contenu différent des fractions protéiques. Par conséquent, en calculant le coefficient albumine-globuline, il est également possible de différencier les fluides d'épanchement. Le coefficient albumine-globuline compris entre 2,5 et 4,0 est typique du transsudat. Un coefficient albumine-globuline compris entre 0,5 et 2,0 est typique de l'exsudat.

Le test de Rivalta est également utilisé pour distinguer le transsudat de l'exsudat. Versez 100 ml d'eau distillée dans un cylindre d'un volume de 100 à 150 ml, acidifiez-le avec 2 à 3 gouttes d'acide acétique concentré. Ajoutez ensuite 1 à 2 gouttes du liquide étudié. Si un nuage blanchâtre formé lors de l'ajout de l'effusion (rappelant la fumée d'une cigarette qui traîne derrière une goutte qui tombe) descend au fond du cylindre, le test est positif. Si la turbidité ne se forme pas ou si une ligne faible apparaît, qui disparaît rapidement (2 à 3 minutes), l'échantillon est alors considéré comme négatif. Le test de Rivalta est basé sur le fait que les fluides effusifs contiennent une séromucine, un composé de nature globuline, qui donne un test positif (c'est-à-dire que cette protéine est dénaturée) avec une faible solution d'acide acétique. Toujours dans l'une des études, il a été constaté que le pH du milieu réactionnel détermine si l'échantillon sera positif ou non, il a été démontré que si le pH est supérieur à 4,6, alors le test Rivalt, même s'il était positif, devient négatif. Des protéines impliquées dans le test Rivalta ont été identifiées. Ce groupe de protéines appartient au système protéique de la phase aiguë : protéine C-réactive, 1-antitrypsine, 1-glycoprotéine acide, haptoglobine, transferrine, céruloplasmine, fibrinogène, hémopexine.

Dans l'étude des propriétés physiques de l'épanchement, la couleur, la transparence et la consistance sont déterminées. La couleur et la transparence de l'épanchement dépendent de sa teneur en protéines et en éléments cellulaires. La consistance dépend de la présence et de la quantité de mucine et de pseudomucine. Selon les propriétés macroscopiques et l'image microscopique, on distingue les épanchements de cholestérol séreux, séreux-purulents, purulents, putréfactifs, hémorragiques, chyleux, de type chyle.

Les épanchements séreux peuvent être soit des transsudats, soit des exsudats. Ils sont transparents, parfois troubles en raison du mélange de fibrine et d'éléments cellulaires (dans ce cas, on parle d'exsudats séreux-fibrineux), de couleur jaunâtre d'intensité variable. Au microscope, un grand nombre de lymphocytes sont déterminés dans les exsudats séreux-fibrineux. De tels épanchements sont observés dans diverses pathologies, par exemple dans la tuberculose, les rhumatismes, la syphilis, etc. Les exsudats séreux-purulents et purulents sont nuageux, vert jaunâtre avec des sédiments meubles abondants. Des épanchements purulents sont observés avec empyème pleural, péritonite, etc. Les exsudats putréfactifs sont troubles, de couleur gris-vert avec une forte odeur putride, ils sont caractéristiques de la gangrène pulmonaire et d'autres processus accompagnés de décomposition tissulaire.

Les exsudats hémorragiques sont troubles, rougeâtres ou brunâtres. Lors de la microscopie dans les exsudats hémorragiques, il existe une grande quantité d'érythrocytes altérés ou inchangés, qui dépend de la période de la maladie. Les exsudats hémorragiques sont souvent observés à la fois dans les néoplasmes et dans les maladies de nature non tumorale, par exemple dans les blessures, les infarctus pulmonaires et la diathèse hémorragique. Les exsudats chyleux sont troubles, de couleur laiteuse, lorsqu'on ajoute de l'éther, ils deviennent clairs. Ils contiennent de petites gouttelettes de graisse et sont observés dans la destruction de gros vaisseaux lymphatiques lors de traumatismes, d'abcès, de tumeurs et d'autres conditions pathologiques. Dans ce cas, la lymphe des vaisseaux lymphatiques endommagés pénètre dans la cavité séreuse et détermine les caractéristiques des propriétés physiques, chimiques et microscopiques du liquide d'épanchement.

Les exsudats de type chyle sont troubles, ont une couleur laiteuse et se forment lors de la décomposition abondante des cellules présentant des signes de dégénérescence graisseuse. L'addition d'éther n'élimine pas ou élimine partiellement les exsudats de type chyle. Un tel épanchement est observé avec la sarcoïdose, la tuberculose, les néoplasmes, la cirrhose atrophique du foie. Les exsudats de cholestérol sont épais, troubles avec une couleur brunâtre jaunâtre et ont un éclat nacré. Au microscope, il y a une teneur élevée en leucocytes, cristaux de cholestérol, acides gras et hématoïdine. Des exsudats similaires se forment lors de l'encapsulation de fluides dans des cavités séreuses au cours de l'évolution chronique du processus inflammatoire et sont observés dans la tuberculose, les néoplasmes malins.

Lors de la réalisation d'une étude biochimique du liquide d'épanchement, il est nécessaire de prélever simultanément du sang veineux pour déterminer le gradient sérum/liquide d'épanchement pour un certain nombre de paramètres biochimiques. Les propriétés chimiques des fluides séreux dépendent des paramètres biochimiques du sérum sanguin. Les composés de bas poids moléculaire dans les fluides séreux sont à des concentrations proches du sérum, tandis que la concentration des composés de haut poids moléculaire est plus faible dans les fluides d'épanchement que dans le sérum.

Dans les fluides d'épanchement, il est possible de déterminer tout indicateur biochimique déterminé dans le sérum sanguin. Les paramètres biochimiques sont déterminés après centrifugation de l'exsudat. Pour la différenciation des transsudats et des exsudats, le rapport des paramètres biochimiques du liquide d'épanchement à ceux du sérum sanguin est important (voir Fig. table). Une méthode moderne pour séparer les fluides d'épanchement en transsudat ou en exsudat implique l'étude de la concentration totale de protéines et de l'activité de la lactate déshydrogénase (LDH) dans le liquide d'épanchement et le sérum du patient ( ).

La concentration de cholestérol diffère également dans les transsudats et les exsudats. Les transsudats contiennent une plus faible concentration de cholestérol que les exsudats. Dans les exsudats de néoplasmes malins, la concentration de cholestérol dépasse 1,6 mmol / l. La concentration de glucose dans le liquide séreux coïncide avec sa concentration dans le sérum sanguin. Le niveau de glucose dans l'exsudat est déterminé par les propriétés glycolytiques des microbes et des leucocytes. Le niveau de glucose diminue dans les fluides d'épanchement dans les néoplasmes et peut refléter l'activité du processus tumoral. Une très faible concentration de glucose dans l'exsudat est un signe de mauvais pronostic. Un faible niveau de lactate dans l'épanchement indique une étiologie non infectieuse du processus (normalement, la concentration de lactate dans le liquide séreux est de 0,67 à 5,2 mmol / l). Dans les néoplasmes malins, une concentration élevée de lactate est observée dans le liquide d'épanchement.

L'examen microscopique des fluides d'épanchement comprend l'étude des préparations natives, le nombre de cytoses dans la chambre (si nécessaire) et l'étude des préparations colorées pour la différenciation des éléments cellulaires. L'examen microscopique du liquide d'épanchement révèle des éléments cellulaires et non cellulaires. Parmi les éléments cellulaires, on trouve des cellules sanguines (érythrocytes, leucocytes, éléments histocytaires), des mésothéliocytes, des cellules néoplasmiques malignes. Parmi les éléments non cellulaires, on trouve des détritus cellulaires (fragments de noyaux, cytoplasme, etc.), des gouttes de graisse, des cristaux (cholestérol, hématoïdine, Charcot-Leiden). Dans les transsudats, contrairement aux exsudats, les lymphocytes et les mésothéliocytes sont principalement détectés au microscope.

L'étude des drogues indigènes est indicative. Il est possible de détecter et d'identifier les érythrocytes, les leucocytes, les cellules tumorales, les cellules mésothéliales, les formations cristallines. Une différenciation claire des leucocytes, des éléments histiocytaires, ainsi que des cellules mésothéliales et tumorales n'est possible que dans les préparations colorées (l'examen des fluides d'épanchement dans les préparations colorées est la principale méthode d'examen microscopique). La détermination quantitative de la teneur en éléments cellulaires dans le liquide d'épanchement est effectuée dans la chambre de Goryaev. Pour diluer l'épanchement, si nécessaire, utiliser une solution isotonique de chlorure de sodium. Si une lyse érythrocytaire est nécessaire, une solution hypotonique de chlorure de sodium est utilisée. La détermination de la cytose peut être utilisée pour surveiller le traitement en cours et contrôler son efficacité.

Les mésothéliocytes sont des cellules mésothéliales qui tapissent la séreuse. Ils sont très réactifs. Les mésothéliocytes peuvent être présents dans la préparation seuls ou sous forme de grappes. Dans les processus pathologiques, des modifications dégénératives, dystrophiques et prolifératives des cellules mésothéliales peuvent être détectées. Le mésothéliocyte a un diamètre de 12 à 30 microns, rond ou ovale, le noyau est situé au centre ou légèrement excentré, la chromatine dans le noyau est uniformément répartie, a une structure à grain fin, le cytoplasme est large, de couleur pâle bleu au bleu. Les cellules des néoplasmes malins de l'épanchement se trouvent dans les lésions primaires (mésothéliome) ou secondaires (germination ou métastase d'autres organes et tissus) de la membrane séreuse. Dans la plupart des cas, la question des lésions primaires ou secondaires des séreuses par le processus tumoral est difficile à trancher. La détection de complexes cellulaires présentant des signes prononcés de malignité est fiable pour le diagnostic d'une tumeur maligne. Pour confirmer la nature du processus néoplasique, la conclusion d'un cytologiste est nécessaire.

La sortie de la partie liquide du sang dans l'interstitium du foyer d'inflammation - en fait exsudation se produit en raison d'une forte augmentation de la perméabilité de la barrière histohématique et, par conséquent, d'une augmentation du processus de filtration et du transport microvésiculaire. La sortie du liquide et des substances qui y sont dissoutes s'effectue aux points de contact des cellules endothéliales. Les écarts entre eux peuvent augmenter avec la vasodilatation, la contraction des structures contractiles et l'arrondi des cellules endothéliales. De plus, les cellules endothéliales sont capables "d'avaler" les plus petites gouttelettes de liquide (micropinocytose), de les transporter du côté opposé et de les rejeter dans le milieu environnant (extrusion).

Le transport du liquide dans les tissus dépend des changements physico-chimiques qui se produisent des deux côtés de la paroi vasculaire. En raison de la libération de protéines du lit vasculaire, leur quantité à l'extérieur des vaisseaux augmente, ce qui contribue à une augmentation de la pression oncotique dans les tissus. Dans le même temps, dans le foyer de V., sous l'influence des hydrolases lysosomales, se produit l'expansion des protéines et d'autres grosses molécules en molécules plus petites. L'hyperonkie et l'hyperosmie au foyer de l'altération créent un afflux de liquide dans le tissu enflammé. Ceci est également facilité par une augmentation de la pression hydrostatique intravasculaire due aux modifications de la circulation sanguine dans le foyer B.

Le résultat de l'exsudation est le remplissage des espaces interstitiels et le foyer de V. avec l'exsudat. L'exsudat diffère du transsudat en ce qu'il contient plus de protéines (au moins 30 g/l), d'enzymes protéolytiques et d'immunoglobulines. Si la perméabilité de la paroi vasculaire est légèrement altérée, les albumines et les globulines pénètrent généralement dans l'exsudat. Avec une forte violation de la perméabilité du plasma, une protéine de poids moléculaire plus élevé (fibrinogène) pénètre dans les tissus. Avec l'altération primaire puis secondaire, la perméabilité de la paroi vasculaire augmente tellement que non seulement les protéines, mais aussi les cellules commencent à y pénétrer. Dans l'hyperémie veineuse, celle-ci est facilitée par la localisation des leucocytes le long de l'enveloppe interne des petits vaisseaux et leur attache plus ou moins forte à l'endothélium (phénomène de marginalisation des leucocytes).

Une augmentation transitoire précoce de la perméabilité vasculaire est causée par l'action de l'histamine, de la PGE, du leucotriène E 4 , de la sérotonine, de la bradykinine. Une réaction transitoire précoce affecte principalement les veinules dont le diamètre ne dépasse pas 100 microns. La perméabilité des capillaires ne change pas. L'action de facteurs étiologiques exogènes de nature mécanique (traumatisme, blessure), thermique ou chimique, provoquant une altération primaire, conduit à une longue réaction de croissance de la perméabilité. En raison de l'action du facteur étiologique, une nécrose des cellules endothéliales se produit au niveau des artérioles, des capillaires et des veinules de petit diamètre, ce qui entraîne une augmentation constante de leur perméabilité. Une réaction retardée et persistante de croissance de la perméabilité microvasculaire se développe dans le foyer de V. des heures ou des jours après son apparition. Il est caractéristique de V., causé par des brûlures, des radiations et des réactions allergiques de type retardé (retardé). L'un des principaux médiateurs de cette réaction est la substance à réaction lente de l'anaphylaxie (SARM), qui n'est rien d'autre que des leucotriènes et des acides liquides polyinsaturés, qui sont formés à partir d'acide arachidonique et de facteur d'activation plaquettaire (PAF). Le SARM dans le foyer de V. forme et libère des labrocytes. Une augmentation persistante de la perméabilité des microvaisseaux dans le foyer de B. SARM provoque une protéolyse des membranes basales des microvaisseaux.

La signification biologique de l'exsudation en tant que composant de V. est de délimiter le foyer de V. par compression des microvaisseaux sanguins et lymphatiques en raison d'un œdème interstinal, ainsi que de diluer les phlogogènes et les facteurs de cytolyse dans le foyer de V. pour prévenir une altération secondaire.

Types d'exsudats : exsudat séreux, purulent, hémorragique, fibreux, mixte

La différence entre exsudat et transsudat.

transsudat- liquide oedémateux qui s'accumule dans les cavités corporelles et les crevasses tissulaires. Le transsudat est généralement incolore ou jaune pâle, transparent, rarement trouble en raison du mélange de cellules individuelles de l'épithélium dégonflé, de lymphocytes et de graisse. La teneur en protéines du transsudat ne dépasse généralement pas 3%; ce sont les albumines sériques et les globulines. Contrairement à l'exsudat, le transsudat est dépourvu des enzymes caractéristiques du plasma. Parfois, les différences qualitatives entre le transsudat et l'exsudat disparaissent: le transsudat devient trouble, la quantité de protéines qu'il contient augmente à 4-5%. Dans de tels cas, il est important pour la différenciation des fluides d'étudier l'ensemble du complexe de changements cliniques, anatomiques et bactériologiques (le patient a des douleurs, une température corporelle élevée, une hyperémie inflammatoire, des hémorragies, la détection de micro-organismes dans le fluide). Pour faire la distinction entre le transsudat et l'exsudat, le test Rivalta est utilisé, en fonction de la teneur différente en protéines qu'ils contiennent.



Conformément à la classification existante, les épanchements sont divisés en exsudats et transsudats. Séparément, le liquide des formations kystiques est isolé.

Transsudats apparaissent pour diverses raisons: modifications de la perméabilité des parois vasculaires; augmentation de la pression intracapillaire; troubles de la circulation locale et générale (avec insuffisance cardiovasculaire, cirrhose du foie ; diminution de la pression oncotique dans les vaisseaux ; syndrome néphrotique, etc.). Il s'agit généralement d'un liquide transparent de couleur jaune clair de réaction légèrement alcaline. Un changement de couleur et de transparence peut être observé dans les transsudats hémorragiques et chyleux. La densité relative du liquide varie de 1,002 à 1,015, la protéine a une concentration de 5-25 g/l.

Exsudats sont formés à la suite de processus inflammatoires causés par diverses raisons. C'est un liquide réactionnel alcalin dont la densité relative est supérieure à 1,018 et la concentration en protéines supérieure à 30 g/l.

Les exsudats sont séreux et séreux-fibrineux (avec pleurésie rhumatismale, pleurésie et péritonite d'étiologie tuberculeuse), séreux-purulents et purulents (avec pleurésie bactérienne et péritonite), hémorragiques (le plus souvent avec des néoplasmes malins, moins souvent avec un infarctus pulmonaire, une diathèse hémorragique, tuberculosis) , chyleux (avec difficulté de drainage lymphatique par le canal thoracique en raison de la compression par la tumeur, hypertrophie des ganglions lymphatiques, ainsi que rupture des vaisseaux lymphatiques en raison d'une blessure ou d'une tumeur), cholestérol (anciens épanchements enkystés contenant des cristaux de cholestérol) , putréfaction (lorsque la flore putréfactive est attachée).

Les fluides exsudatifs sont obtenus par ponction de la cavité correspondante. Le matériau résultant est collecté dans un plat propre et sec. Afin d'éviter la coagulation, du citrate de sodium est ajouté à raison de 1 g pour 1 litre de solution liquide ou de citrate de sodium (38 g/l) dans un rapport de 1: 9. DÉTERMINATION DES PROPRIÉTÉS PHYSIQUES ET CHIMIQUES

Couleur le liquide est différent selon la nature de l'épanchement. Les transsudats et les exsudats séreux sont de couleur jaune clair. Les exsudats purulents sont généralement vert jaunâtre avec une teinte brune due à la présence de sang. Un grand mélange de sang donne au liquide une teinte rouge-brun (exsudat hémorragique). La couleur blanc laiteux est caractéristique des exsudats chyleux. L'exsudat de cholestérol est brun jaunâtre, parfois avec une teinte brune.

Transparence le liquide dépend aussi de la nature de l'épanchement. Les transsudats et les exsudats séreux sont transparents. Hémorragique, purulent, chyleux - trouble.

Définition densité relative effectué à l'aide d'un uromètre, en utilisant les méthodes décrites dans la section "Examen d'urine". Le dosage quantitatif des protéines est réalisé de la même manière que dans les urines avec de l'acide sulfosalicylique (30 g/l). Étant donné que le liquide exsudatif contient toujours des protéines en quantité beaucoup plus importante que l'urine, la dilution principale du liquide exsudatif est préparée par 100 fois, pour laquelle 9,9 ml de solution de chlorure de sodium (9 g / l) sont ajoutés à 0,1 ml de l'exsudatif fluide. Si la teneur en protéines de l'exsudat est très élevée, la dilution peut être poursuivie avec la dilution de base. Le calcul est effectué selon la courbe d'étalonnage, en tenant compte du degré de dilution du liquide.

Test de Rivalta proposé pour la différenciation des transsudats et des exsudats. L'exsudat contient de la séromucine (une substance de nature globuline), donnant un test Rivalta positif

Progression de la définition. Dans un cylindre de 100 ml contenant de l'eau distillée, acidifiée avec 2 à 3 gouttes d'acide acétique concentré, ajouter 1 à 2 gouttes du liquide d'essai. Si les gouttes qui tombent forment un nuage blanchâtre (rappelant la fumée de cigarette) qui descend au fond du cylindre, le test est positif. Dans le transsudat, la turbidité n'apparaît pas le long du parcours de la goutte, ou elle apparaît très faiblement et disparaît rapidement. Le test de Rivalta ne fait pas toujours la distinction entre le transsudat et l'exsudat dans les fluides mixtes. L'examen microscopique est d'une grande importance pour leur différence.

Tableau 11

Particularités des transsudats et des exsudats

Propriétés	Liquide exsudatif
	transsudat	exsudat
	jaune citron	Jaune citron, jaune verdâtre, brun, jaune, rouge brunâtre, sanglant, blanc laiteux
Personnage	Séreux	Séreuse, séreuse-purulente, purulente, putréfactive, hémorragique
Turbidité	Clair ou légèrement nuageux	Différents degrés de turbidité
Densité relative	< 1, 015
coagulation	Ne s'enroule pas	Recroquevillé
	< 30 g/l
Test de Rivalta	négatif	Positif
Composition cellulaire	Principalement des lymphocytes, des cellules mésothéliales	Divers leucocytes, macrophages, mésothélium, partiellement en état de prolifération (nombre différent), érythrocytes, cristaux de cholestérol, lipophages, gouttelettes de graisse, éléments de néoplasmes malins
Composition bactérienne	Habituellement stérile	Mycobacterium tuberculosis, streptocoques, staphylocoques

ÉTUDE MICROSCOPIQUE

L'examen microscopique des fluides d'épanchement est effectué après centrifugation pendant 5 à 10 minutes à 1500-3000 tr/min et préparation de préparations à partir du sédiment. L'examen microscopique doit être effectué dans les préparations natives et colorées.

médicaments indigènes. Une goutte de sédiment est appliquée sur une lame et recouverte d'une lamelle, microscopée à l'aide de l'oculaire 7, objectif 40. L'étude des préparations natives permet de juger grossièrement de la nature du processus pathologique, du nombre d'éléments cellulaires, de la prédominance de divers éléments uniformes, la présence de complexes de cellules tumorales, de cristaux et d'autres éléments.

Leucocytes en petite quantité (jusqu'à 10-15 dans le champ de vision) se trouvent dans les transsudats et en grande quantité dans les fluides d'origine inflammatoire. des globules rouges présent en quantité variable dans tout liquide. Dans les transsudats et les exsudats séreux, ils sont détectés en petite quantité en raison d'un mélange traumatique de sang (au moment de la ponction). Les exsudats hémorragiques contiennent généralement de très nombreux globules rouges.

cellules mésothéliales - grandes cellules jusqu'à 25 microns et plus. Ils se trouvent en grand nombre dans les transsudats, sont localisés isolément, parfois sous forme de grappes. Des changements dégénératifs parfois prononcés se révèlent sous la forme d'une vacuolisation du cytoplasme (cellules cricoïdes).

cellules tumorales sont généralement situés sous la forme de complexes sans limites claires avec des signes prononcés de polymorphisme de taille et de forme. Gouttes de graisse sous forme de gouttes rondes à lumière fortement réfractante, colorées au Soudan III en orange, se trouvent dans les exsudats purulents avec une décomposition cellulaire prononcée et dans les exsudats chyleux.

Cristaux de cholestérol - plaques transparentes incolores avec coins cassés en forme de marches. On les retrouve dans les anciens exsudats de cholestérol enkysté, le plus souvent d'étiologie tuberculeuse.

Préparations peintes. Une petite goutte de sédiment est déposée sur une lame de verre. Le médicament est préparé de la même manière qu'un frottis sanguin, séché à l'air. La coloration se fait après fixation des frottis avec des colorants hématologiques conventionnels. Les éléments cellulaires des exsudats sont colorés plus rapidement que les éléments sanguins, de sorte que le temps de coloration est réduit à 8-10 minutes. Dans les frottis, le pourcentage de certains types de leucocytes est calculé et la morphologie d'autres éléments cellulaires est examinée.

Dans les préparations colorées, on trouve les éléments cellulaires suivants.

Neutrophiles cellules prédominantes d'exsudat purulent. Selon la morphologie des neutrophiles, on peut juger de la sévérité du processus inflammatoire. Des modifications dégénératives des neutrophiles (granularité toxogène et vacuolisation du cytoplasme, hypersegmentation et pycnose des noyaux, caryorrhexis et caryolyse jusqu'à la désintégration cellulaire) sont observées dans les cas les plus sévères d'inflammation purulente. Les neutrophiles avec le phénomène de phagocytose se retrouvent dans des processus plus bénins.

Lymphocytes sont les cellules prédominantes de l'exsudat séreux (jusqu'à 80-90% de tous les leucocytes). On les retrouve également en faible quantité dans les transsudats. Leur morphologie ne diffère pas de celle du sang périphérique.

Cellules plasmatiques peut se produire avec une nature prolongée d'inflammation des membranes séreuses.

Histiocytes - monocytes tissulaires, cellules de différentes tailles avec une structure délicate du noyau d'une forme monocytoïde et un cytoplasme bleu grisâtre. Souvent retrouvé dans les exsudats purulents lors de l'assainissement de la cavité.

Macrophages - cellules polymorphes avec un noyau de forme irrégulière, en forme de haricot avec des inclusions dans le cytoplasme. On les trouve avec des hémorragies dans la cavité pleurale, des tumeurs, une pleurésie purulente.

cellules mésothéliales bordée de membranes séreuses. Grandes tailles jusqu'à 30 microns, arrondi, le noyau rond est souvent central et large du cytoplasme gris au bleu foncé. Parfois, il peut y avoir deux et plusieurs cœurs. On les trouve dans les exsudats et les transsudats au stade initial du processus inflammatoire, ainsi que dans les tumeurs. Dans les liquides de grande prescription, on note des modifications dégénératives de ces cellules (vacuolisation du cytoplasme, un noyau situé de manière excentrique).

Cellules de tumeurs malignes grandes cellules 40-50 microns avec polymorphisme prononcé (taille, structure et couleur différentes des noyaux, violation du rapport nucléaire-cytoplasmique en faveur du noyau, hyperchromie des noyaux, grands nucléoles multiples). On les retrouve avec des carcinomatoses de la plèvre, du péritoine dues à des lésions primaires (mésothéliome) ou secondaires (métastases d'autres organes).

10. Concepts modernes d'hémostase. Lien vasculaire-plaquettaire et plasmatique de l'hémostase. Mécanismes d'action et d'activation biologiques.Méthodes de laboratoire pour l'étude de l'hémostase vasculaire-plaquettaire et de la coagulation.

Système d'hémostase est une combinaison de nombreux facteurs biologiques et processus biochimiques qui maintiennent l'intégrité structurelle des vaisseaux sanguins, l'état liquide du sang et sa fluidité.

Les fonctions:

Assure la circulation du sang liquide dans le lit vasculaire;

Aide à arrêter le saignement en cas d'endommagement du vaisseau.

Composants fonctionnels et morphologiques :

1) endothélium vasculaire,

2) les cellules sanguines (leucocytes, érythrocytes, plaquettes),

3) le système de coagulation sanguine, qui comprend les facteurs plasmatiques et plaquettaires, le lien anticoagulant et le système sanguin fibrinolytique.

L'hémostase comprend 3 étapes principales :

L'hémostase primaire, qui concerne principalement les vaisseaux sanguins et les plaquettes, se termine par la formation d'un caillot plaquettaire,

Hémostase secondaire - dans laquelle principalement des facteurs plasmatiques sont impliqués, elle est pompée dans la formation du thrombus de fibrine final.

Fibrinolyse conduisant à la dissolution du thrombus.

Selon le mécanisme d'arrêt du saignement, il existe hémostase primaire et secondaire.

Primaire l'hémostase (microcirculatoire ou vasculaire-plaquettaire) est réalisée dans de petits vaisseaux d'un diamètre allant jusqu'à 200 microns. Un thrombus primaire (plaquettaire) se forme, ce qui arrête le saignement des microvaisseaux dans lesquels la pression artérielle est basse. Un endothélium sain et non endommagé a des propriétés thromborésistantes et donc le sang circule librement dans les vaisseaux, les cellules sanguines ne collent pas à la paroi vasculaire. Lorsque la paroi vasculaire est endommagée, l'endothélium acquiert des propriétés thrombogènes. Le réflexe développe un spasme du vaisseau au site de la blessure. Les principaux stimulateurs de l'adhésion plaquettaire sont le collagène, exposé après traumatisme à l'endothélium vasculaire, et le facteur von Willebrand, synthétisé par les cellules endothéliales et libéré dans la circulation sanguine après leur atteinte. Les plaquettes commencent à coller aux bords du vaisseau endommagé, se chevauchent, se fixent, se collent (adhérence et agrégation). L'ADP, la sérotonine et l'adrénaline sont libérées des plaquettes, ce qui augmente encore les spasmes vasculaires et l'agrégation plaquettaire. À partir des tissus endommagés et de l'endothélium vasculaire, la thromboplastine tissulaire est libérée, qui interagit avec les facteurs protéiques plasmatiques (7,4,10,5,2) et forme une certaine quantité de thrombine. En conséquence, l'agrégation devient irréversible et un thrombus primaire ou plaquettaire se forme. Cela arrête le saignement des petits vaisseaux.

Évaluation en laboratoire de l'hémostase vasculo-plaquettaire.

Parallèlement, l'état des capillaires et des plaquettes est examiné : leur nombre et leur fonction (adhésion et agrégation).

durée du saignement capillaire déterminé après une ponction cutanée strictement dosée. Selon la méthode Duke, la peau de la phalange de l'ongle de l'annulaire est perforée, selon Ivy - 3 perforations (encoches) sont appliquées sur la peau du tiers supérieur de l'avant-bras tout en créant une pression avec un brassard de 40-50 mmHg. Art.

Normalement, la durée du saignement selon Duke est de 2 à 4 minutes, selon Ivy - 1 à 7 minutes.

Le temps de saignement capillaire dépend de l'état des capillaires, du nombre et de l'activité fonctionnelle des plaquettes, de leur capacité à adhérer et à s'agréger.

L'allongement du temps de saignement est d'une importance pratique: dans les formes sévères de déficit plaquettaire et de thrombocytopénie prononcée, il est particulièrement prolongé de manière significative dans la maladie de von Willebrandt. Le temps de saignement augmente également avec les maladies du foie, la DIC, les tumeurs malignes, l'hypovitaminose C, l'hypofonction du cortex surrénalien, l'empoisonnement par des substances hépatotoxiques, etc.

En cas de troubles de la coagulation sanguine, celle-ci reste généralement normale, puisque l'arrêt du saignement dans la zone de la microcirculation est assuré principalement par les plaquettes, et non par l'hémocoagulation. Avec certains troubles de la coagulation (syndromes thrombo-hémorragiques sévères, hyperhéparinémie importante), le temps de saignement peut être allongé.

Raccourcissement - indique seulement une capacité spastique accrue des capillaires

Résistance capillaire sont examinés à l'aide de divers échantillons - une pincée, un garrot, etc.

Essai de pincement - Normalement, après avoir pincé le pli cutané sous la clavicule, ni immédiatement ni après 24 heures, il ne doit y avoir de pétéchies ou d'ecchymoses.

Test de garrot - chez les personnes en bonne santé, après avoir serré l'épaule avec un brassard de tonomètre (80 mm Hg) pendant 5 minutes, les pétéchies ne se forment pas ou il n'y en a pas plus de 10 d'un diamètre allant jusqu'à 1 mm (dans un cercle avec un diamètre de 2,5 cm) - un test négatif.

La diminution de la résistance (tests positifs) indique l'infériorité des parois des microvaisseaux. Cela peut être le résultat d'un effet infectieux-toxique, d'une C-hypovitaminose, de troubles endocriniens (règles menstruelles, ménopause pathologique), etc. Le plus souvent, un test de garrot positif est observé chez les patients atteints de thrombocytopénie et de thrombocytopathies de toutes sortes, avec DIC, avec activation de la fibrinolyse, un surdosage en anticoagulants indirects, avec un déficit en facteurs du complexe prothrombique.

La numération plaquettaire (PL, PLT) est déterminé par microscopie à contraste de phase ou sur un analyseur automatique (la norme est de 150-450 * 10 9 / l).

Une diminution du nombre de plaquettes peut être associée à une diathèse hémorragique, une DIC, un purpura nic idiopathique (maladie de Werlhof), un purpura thrombocytopénique thrombotique (maladie de Moshkowitz), une thrombocytopénie immunitaire, une leucémie aiguë, des maladies de stockage (Gaucher, Niemann-Pick, etc.), aplasique, anémie par carence en vitamine B12 et folique, maladies du foie, collagénose. Un certain nombre de médicaments antibactériens, anticonvulsivants, diurétiques, antirhumatismaux, antipaludéens, analgésiques, hypoglycémiants peuvent provoquer une thrombocytopénie médicamenteuse.

La thrombocytose primaire peut être essentielle et survient également dans les maladies myéloprolifératives, secondaire - dans les néoplasmes malins, la perte de sang aiguë, les processus inflammatoires, l'anémie ferriprive, après une intervention chirurgicale, après une activité physique intense.

Adhésivité plaquettaire

Méthodes directes et indirectes connues pour évaluer l'adhésivité des plaquettes. Les méthodes directes consistent à compter les plaquettes fixées dans une colonne de billes de verre en faisant passer un certain volume de sang à un débit standard Les méthodes indirectes sont basées sur l'établissement de la différence entre le nombre de plaquettes dans le sang veineux et le sang s'écoulant d'une plaie sur la peau d'un doigt (adhésivité in nivo). Une diminution de l'adhésivité est observée dans un certain nombre de thrombocytopathies et dans la maladie de von Willebrand. Les valeurs normales sont de 20 à 55 %.

Une diminution de l'adhésivité jusqu'à 0 % est observée dans un certain nombre de thrombocytopathies congénitales (thrombasthénie de Glatsmann, syndrome de type aspirine, syndrome de Bernard-Soulier) et dans la maladie de von Willebrand.

Agrégation plaquettaire

L'étude de la capacité des plaquettes à s'agréger permet de :

- diagnostic d'anomalies plaquettaires héréditaires (réaction de libération préservée - thrombasthénie de Glanzman ; réaction de libération altérée - "syndrome de type aspirine" ; maladies d'un pool d'accumulation insuffisant - syndrome des "plaquettes grises" ; maladies avec une violation prédominante de l'adhérence - maladie de von Willebrand, Bernard -Syndrome de Soulier);

– diagnostic des pathologies plaquettaires acquises (cirrhose du foie, urémie, athérosclérose, cardiopathie ischémique, diabète sucré, hyperlipidémie, paraprotéinémie…) ;

- choix de la dose et évaluation de l'efficacité du traitement antiplaquettaire ;

- évaluation de l'activité fonctionnelle des plaquettes lors de la transfusion de thrombus.

Peut être spontané ou induit. Ce dernier est plus couramment utilisé. L'ADP, l'adrénaline, le collagène, le fibrinogène bovin, la ristomycine sont utilisés comme inducteurs.

Le choix de l'agrégateur dépend de l'objectif de l'étude.

Pour évaluer les conditions thrombolytiques, l'ADP est le plus souvent utilisé à faible dose, pour évaluer le traitement antiplaquettaire, l'ADP à plus forte dose, parfois le collagène. Dans l'étude des manifestations hémorragiques, un complexe d'agrégats est utilisé : ADP, adrénaline (pour évaluer l'état des récepteurs membranaires) ; ristomycine (pour évaluer les cofacteurs nécessaires); ADP, adrénaline, collagène (évaluation de la capacité des plaquettes à déclencher des réactions).

Principe d'agrégation plaquettaire est basé sur la mesure du taux et du degré de diminution de la densité optique du plasma plaquettaire lorsqu'il est mélangé avec des inducteurs d'agrégation. Cela peut être évalué visuellement, à l'aide d'un microscope et également à l'aide d'un agrégomètre.

Secondaire hémostase (macrocirculatoire, coagulation).

Elle est réalisée avec des saignements de vaisseaux de moyen et gros calibre. Fourni par le système de coagulation, qui se compose de deux maillons - procoagulant et anticoagulant.

Le processus de coagulation du sang plasmatique est une cascade de réactions enzymatiques, dans lesquelles chaque facteur précédent est converti en une enzyme active, activant successivement la proenzyme suivante. Le produit final du processus de coagulation sanguine est un polymère de fibrine - une protéine insoluble qui forme un réseau dans lequel les plaquettes et autres cellules sanguines sont retenues, la fibrine finale est formée - un caillot plaquettaire (thrombus hémostatique). L'ensemble du processus est divisé en 4 phases :

Première phase-formation de prothrombinase, se produit de 2 manières - selon le mécanisme externe et interne. Le mécanisme interne est déclenché par l'activation du facteur 12 au contact d'une paroi vasculaire endommagée. Les facteurs plasmatiques 11,10,9,8,5,4, le facteur Fletcher, le facteur von Willebrand, les protéines C et S, le 3ème facteur plaquettaire interviennent également. La formation de prothrombinase sanguine prend le temps principal de la coagulation du sang 4 min 55 sec - 9 min 55 sec. Le mécanisme externe commence par l'apparition dans la circulation sanguine du 3e facteur (thromboplastine tissulaire) de la paroi vasculaire endommagée (il est normalement absent dans le plasma), qui, lorsqu'il interagit avec les facteurs plasmatiques 7,10,5,4, forme la prothrombinase tissulaire . Fonctionne 2 à 3 fois plus vite.

Seconde phase- formation de thrombine. La prothrombinase convertit la prothrombine en thrombine (2-2a). Les facteurs 5, 7, 10 et 3ème plaquettaire participent à cette réaction. Durée 2-5sec. Le sang reste liquide.

Troisième phase-formation de fibrine, dure 2-5sec. La thrombine clive les peptides du fibrinogène, le convertissant en monomère de fibrine. Ce dernier polymérise et tombe sous forme de brins de fibrine entrelacés. Ce réseau emporte avec lui les éléments figurés du sang. Un thrombus rouge lâche se forme. Il est très labile et peut être dissous par la fibrinolysine, l'urée. La thrombine en présence de facteur 4 peut activer la fibrinase (facteur 13) qui, agissant sur un thrombus rouge labile, peut l'épaissir et le rendre peu soluble.

Quatrième- phase de postcoagulation - rétraction et fibrinolyse. Elle est réalisée par le système de fibrinolyse, qui comprend le plasminogène, ses activateurs et ses inhibiteurs. Le plasminogène après activation se transforme en plasmine. La plasmine divise la fibrine en fragments séparés (produits de dégradation de la fibrine), qui sont éliminés par le système phagocytaire. L'activation du plasminogène se produit normalement sur un caillot de fibrine lorsque le facteur 12 activé et la prékallikréine y sont fixés. L'activation du plasminogène peut être induite par des protéinases tissulaires bactériennes. Ayant terminé sa fonction, la plasmine est inactivée par un système d'inhibiteurs.

Il y a loin d'une différence entre transsudat et exsudat, bien que ces deux termes soient incompréhensibles pour une personne ignorante. Mais un médecin professionnel doit être capable de distinguer l'un de l'autre, car ces types de liquide d'épanchement nécessitent une approche différente. Essayons de parler des transsudats et des exsudats de manière à ce que cela soit compréhensible même pour une personne sans formation médicale.

Quels sont les fluides d'épanchement

Les fluides exsudatifs se forment et s'accumulent dans les cavités séreuses, qui comprennent les espaces pleural, abdominal, péricardique, épicardique et synovial. Dans ces cavités se trouve un fluide séreux qui assure le fonctionnement normal des organes internes correspondants (poumons, organes abdominaux, cœur, articulations) et les empêche de se frotter contre les membranes.

Normalement, ces cavités ne doivent contenir que du liquide séreux. Mais avec le développement des pathologies, des épanchements peuvent aussi se former. Les cytologistes et les histologues sont engagés dans leurs recherches en détail, car un diagnostic compétent des transsudats et des exsudats permet de prescrire le traitement correct et de prévenir les complications.

transsudat

Du latin trans - à travers; sudor - sueur. Epanchement d'origine non inflammatoire. Il peut s'accumuler en raison de problèmes de circulation sanguine et de circulation lymphatique, du métabolisme eau-sel, ainsi que de la perméabilité accrue des parois vasculaires. Le transsudat contient moins de 2 % de protéines. Ce sont des albumines et des globulines qui ne réagissent pas avec les protéines colloïdales. En termes de caractéristiques et de composition, le transsudat est proche du plasma. Il est transparent ou a une teinte jaune pâle, parfois avec des impuretés troubles de cellules épithéliales et de lymphocytes.

La survenue d'un transsudat est généralement due à la congestion. Il peut s'agir de thrombose, d'insuffisance rénale ou cardiaque, d'hypertension. Le mécanisme de formation de ce fluide est associé à une augmentation de la pression sanguine interne et à une diminution de la pression plasmatique. Si en même temps la perméabilité des parois vasculaires est augmentée, le transsudat commence à être libéré dans les tissus. Certaines maladies associées à l'accumulation de transsudats portent des noms particuliers : hydropéricarde, ascite abdominale, ascite-péritonite, hydrothorax.

D'ailleurs! Avec un traitement approprié, le transsudat peut disparaître et la maladie disparaîtra. Si vous le démarrez, l'extravasation augmentera et, avec le temps, le liquide stagnant peut s'infecter et se transformer en exsudat.

Exsudat

Du latin exso - sors sudor - sueur. Formé dans de petits vaisseaux sanguins à la suite de processus inflammatoires. Le liquide sort par les pores vasculaires dans les tissus, les infectant et contribuant au développement ultérieur de l'inflammation. L'exsudat contient 3 à 8 % de protéines. De plus, il peut contenir des cellules sanguines (leucocytes, érythrocytes).

La formation et la libération d'exsudat des vaisseaux sont dues aux mêmes facteurs (une augmentation de la pression artérielle, une augmentation de la perméabilité des parois vasculaires), mais une inflammation des tissus est également présente. De ce fait, le liquide d'épanchement a une composition et une nature inflammatoire différentes, ce qui est plus dangereux pour le patient. C'est la principale différence entre transsudat et exsudat : ​​ce dernier est plus dangereux, donc plus de temps est consacré à sa recherche.

Important! Ils essaient de se débarrasser de l'exsudat détecté dès que possible. Sinon, des cellules cancéreuses peuvent commencer à s'y former, provoquant une maladie oncologique de l'organe dans la cavité duquel se trouve l'exsudat.

Exsudat et ses types

Différents types d'exsudats diffèrent les uns des autres par leur composition, les causes de l'inflammation et ses caractéristiques. Il est possible de déterminer le type de liquide exsudatif à l'aide d'une ponction, après quoi le contenu évacué (pompé) d'une cavité particulière est envoyé pour des recherches en laboratoire. Bien que le médecin puisse parfois tirer des conclusions primaires de l'apparence du liquide.

Exsudat séreux

En fait, un épanchement séreux est un transsudat qui a commencé à se modifier à cause d'une infection. Presque complètement transparent; la teneur en protéines est modérée (jusqu'à 5%), il y a peu de leucocytes, pas d'érythrocytes. Le nom reflète le fait qu'un tel exsudat se produit dans les membranes séreuses. Il peut se former à la suite d'une inflammation causée par des allergies, une infection, des plaies profondes ou des brûlures.

exsudat fibrineux

Il contient une grande quantité de fibrinogène - une protéine incolore, dont la teneur accrue indique la présence de maladies inflammatoires ou infectieuses aiguës: grippe, diphtérie, infarctus du myocarde, pneumonie, cancer. L'exsudat fibrineux se trouve dans les bronches, le tractus gastro-intestinal et la trachée. Le danger des dépôts fibrineux réside dans le risque de leur germination dans le tissu conjonctif et la formation d'adhérences.

Exsudat purulent

Ou juste du pus. Contient des cellules mortes ou détruites, des enzymes, des fils de fibrine et d'autres éléments. En raison de leur décomposition, un tel exsudat a une mauvaise odeur prononcée et une couleur pathologique pour les liquides organiques : verdâtre, brunâtre, bleuâtre. L'exsudat purulent se distingue également par une viscosité accrue, due à la teneur en acides nucléiques qu'il contient.

Un type de pus est un exsudat putréfactif. Il se forme à la suite d'une inflammation causée par des bactéries anaérobies (sans oxygène). Il a une odeur dégoûtante plus prononcée.

Exsudat hémorragique

Il a une teinte rosée, ce qui s'explique par la teneur accrue en globules rouges qu'il contient. Un exsudat hémorragique se forme souvent dans la cavité pleurale à la suite de la tuberculose. Une partie du liquide peut être crachée.

D'autres types d'exsudats (séreux, fibrineux, purulents) peuvent être modifiés en hémorragiques avec une augmentation progressive de la perméabilité vasculaire ou avec leur destruction. Autres maladies signalées par l'exsudat hémorragique : variole, anthrax, grippe toxique.

Visqueux

Il contient une grande quantité de mucine et de lysozyme, ce qui lui confère une structure muqueuse. Le plus souvent, il se forme dans les maladies inflammatoires du nasopharynx (amygdalite, pharyngite, laryngite).

Exsudat chyleux

Contient du chyle (lymphe), comme en témoigne sa couleur laiteuse. Si l'exsudat chyleux stagne, une couche plus huileuse avec des lymphocytes, des leucocytes et un petit nombre d'érythrocytes se forme à sa surface. Le plus souvent, un tel épanchement inflammatoire se retrouve dans la cavité abdominale; moins souvent - dans la plèvre.

Il existe également un exsudat pseudochyleux, qui est également formé par la lymphe, mais la quantité de graisse qu'il contient est minime. Se produit avec des problèmes rénaux.

Cholestérol

Assez épais, avec une teinte beige, rosâtre ou brun foncé (en présence d'un grand nombre d'érythrocytes). Il contient des cristaux de cholestérol, d'où son nom. L'exsudat de cholestérol peut être présent dans n'importe quelle cavité pendant une longue période et être découvert par hasard lors d'une intervention chirurgicale.

Exsudats rares

Dans des cas exceptionnels, des exsudats neutrophiles (constitués de neutrophiles), lymphocytaires (provenant des lymphocytes), mononucléaires (provenant des monocytes) et éosinophiles (provenant des éosinophiles) se retrouvent dans les cavités. Extérieurement, ils ne diffèrent presque pas de ceux énumérés précédemment et leur composition ne peut être clarifiée qu'à l'aide d'une analyse chimique.

Études en laboratoire des fluides d'épanchement

L'importance de déterminer le type et la composition des fluides d'épanchement est mise en évidence par le fait que leurs premières études en laboratoire ont commencé au 19ème siècle. En 1875, le chirurgien allemand Heinrich Quincke signale la présence de cellules tumorales isolées des fluides des cavités séreuses. Avec le développement de l'analyse chimique et l'avènement de nouvelles méthodes de recherche (notamment la coloration des fluides biologiques), il est également devenu possible de déterminer les caractéristiques des cellules cancéreuses. En URSS, la cytologie clinique a commencé à se développer activement à partir de 1938.

L'analyse de laboratoire moderne est basée sur un algorithme spécifique. La nature du liquide d'épanchement est d'abord précisée : inflammatoire ou non. Celle-ci est déterminée par le contenu de plusieurs indicateurs :

• protéine (indicateur clé);
• albumines et globulines;
• cholestérol;
• le nombre de leucocytes ;
• quantité absolue de liquide (LDH), sa densité et son pH.

Une étude approfondie vous permet de distinguer avec précision l'exsudat du transsudat. Si la nature inflammatoire est déterminée, une série d'analyses s'ensuit, permettant de déterminer la composition de l'exsudat et son apparence. L'information permet au médecin d'établir un diagnostic et de prescrire un traitement.

Si l'analyse cytologique ne suffit pas, le liquide exsudatif est envoyé pour histologie. Une telle étude peut révéler la présence de cellules cancéreuses dans l'épanchement inflammatoire (par exemple, mésothéliome de la plèvre, angiosarcome du cœur, etc.).

Les auteurs): O.Yu. KAMYSHNIKOV Pathologiste vétérinaire, "Centre vétérinaire de pathomorphologie et de diagnostic de laboratoire du Dr Mitrokhina N.V."
Magazine: №6-2017

Mots clés: transsudat, exsudat, épanchement, ascite, pleurésie

mots clés: transsudat, exsudat, épanchement, ascite, pleurésie

annotation

L'étude des fluides d'épanchement est actuellement d'une grande importance dans le diagnostic des conditions pathologiques. Les données obtenues à partir de cette étude permettent au clinicien d'obtenir des informations sur la pathogenèse de la formation d'épanchement et d'organiser correctement les mesures thérapeutiques. Cependant, certaines difficultés surgissent toujours sur le chemin du diagnostic pouvant conduire à un piège diagnostique. La nécessité de ce travail est apparue en relation avec le besoin croissant de développement et d'application de la méthode d'étude des fluides d'épanchement en clinique par des médecins de diagnostic de laboratoire clinique et des cytologistes. Par conséquent, une attention particulière sera accordée aux tâches principales des assistants de laboratoire - différencier l'épanchement en transsudat et exsudat, et à la tâche la plus importante des cytologistes - vérifier la composante cellulaire du liquide et formuler une conclusion cytologique.

L'examen des fluides d'épanchement a actuellement une grande importance dans le diagnostic des conditions pathologiques. Les résultats de cette étude permettent au clinicien d'obtenir des informations sur la pathogenèse de la formation de l'épanchement et d'organiser correctement les interventions médicales. Cependant, sur le chemin du diagnostic, il y a toujours certaines difficultés qui peuvent conduire à un piège diagnostique. La nécessité de ce travail est apparue en relation avec le besoin croissant de maîtriser et d'appliquer la méthode d'examen des fluides d'exsudat en clinique par les médecins de diagnostic de laboratoire clinique et les cytologistes. Par conséquent, une attention sera accordée, ainsi que les tâches principales des assistants de laboratoire - pour différencier l'épanchement de transsudat et d'exsudat, et la tâche la plus importante des cytologistes est de vérifier la composante cellulaire du liquide et de formuler une conclusion cytologique.

Abréviations: ES - exsudat, TS - transsudat, C - cytologie, MK - cellules mésothéliales.

Arrière plan

Je voudrais souligner certaines des données historiques qui ont formé l'image moderne du diagnostic de laboratoire des fluides d'épanchement. L'étude des fluides des cavités séreuses était déjà utilisée au XIXe siècle. En 1875, H.J. Quincke et en 1878 E. Bocgehold ont souligné les caractéristiques des cellules tumorales telles que la dégénérescence graisseuse et les grandes tailles par rapport aux cellules mésothéliales (MC). Le succès de ces études était relativement faible, car la méthode d'étude des préparations fixées et colorées n'existait pas encore. Paul Ehrlich en 1882 et M.N. Nikiforov en 1888 a décrit des méthodes spécifiques pour fixer et colorer les fluides biologiques, tels que les frottis sanguins, les épanchements, les écoulements, etc. J.C. Dock (1897) a souligné que les signes des cellules cancéreuses sont une augmentation significative de la taille des noyaux, une modification de leur forme et de leur emplacement. Il a également noté une atypie du mésothélium lors de l'inflammation. Le pathologiste et microbiologiste roumain A. Babes a créé la base de la méthode cytologique moderne utilisant des taches d'azur. Le développement ultérieur de la méthode a eu lieu parallèlement à l'entrée dans la médecine pratique du diagnostic de laboratoire, qui dans notre pays comprenait des cytologistes dans les rangs de ses spécialistes. La cytologie clinique en URSS en tant que méthode d'examen clinique des patients a commencé à être utilisée en 1938 par N.N. Schiller-Volkova. Le développement des diagnostics de laboratoire clinique en médecine vétérinaire était à la traîne, de sorte que le premier travail fondamental des médecins et scientifiques nationaux dans ce domaine de connaissances n'a été publié qu'en 1953-1954. Il s'agissait d'un "Méthodes de recherche vétérinaire en médecine vétérinaire" en trois volumes édité par le prof. SI. Afonsky, D.V.S. MM. Ivanova, prof. Ya.R. Kovalenko, où pour la première fois les méthodes de diagnostic de laboratoire, sans doute extrapolées du domaine de la médecine humaine, ont été présentées de manière accessible. Depuis ces temps anciens jusqu'à nos jours, la méthode d'étude des fluides d'épanchement a été constamment améliorée, sur la base des connaissances acquises précédemment, et fait désormais partie intégrante de toute étude de laboratoire de diagnostic clinique.

Cet article tente de mettre en évidence les bases et l'essence de l'étude en laboratoire des fluides d'épanchement.

caractéristiques générales

Les fluides exsudatifs sont appelés composants du plasma sanguin, de la lymphe, du liquide tissulaire, qui s'accumulent dans les cavités séreuses. Selon la croyance généralement admise, l'épanchement est un liquide dans les cavités corporelles et le liquide œdémateux s'accumule dans les tissus selon le même principe. Les cavités séreuses du corps sont un espace étroit entre deux feuilles de la membrane séreuse. Les membranes séreuses sont des pellicules issues du mésoderme, représentées par deux feuillets : pariétal (pariétal) et viscéral (organe). La microstructure de la couche pariétale et viscérale est représentée par six couches :

1. mésothélium ;

2. membrane limite;

3. couche fibreuse superficielle de collagène ;

4. réseau superficiel non orienté de fibres élastiques ;

5. réseau élastique longitudinal profond ;

6. couche de réseau profond de fibres de collagène.

Le mésothélium est un épithélium pavimenteux monocouche, composé de cellules polygonales étroitement adjacentes les unes aux autres. Malgré sa forme épithéliale, le mésothélium est d'origine mésodermique. Les cellules sont très diverses dans leurs propriétés morphologiques. Des cellules binucléaires et trinucléaires peuvent être observées. Le mésothélium sécrète constamment un fluide qui exerce une fonction d'absorption des chocs de glissement, est capable de prolifération extrêmement intensive et présente les caractéristiques d'un tissu conjonctif. À la surface du MC, il existe de nombreuses microvillosités qui augmentent la surface de toute la membrane de la cavité séreuse d'environ 40 fois. La couche fibreuse du tissu conjonctif des feuillets des membranes séreuses détermine leur mobilité. L'apport sanguin de la membrane séreuse de la feuille viscérale est réalisé grâce aux vaisseaux de l'organe qu'elle recouvre. Et pour la feuille pariétale, la base du système circulatoire est un réseau à large boucle d'anastomoses artério-artériolaires. Les capillaires sont situés immédiatement sous le mésothélium. Le drainage lymphatique des membranes séreuses est bien développé. Les vaisseaux lymphatiques communiquent avec les espaces séreux par des ouvertures spéciales - les stomatomes. De ce fait, même un léger blocage du système de drainage peut entraîner une accumulation de liquide dans la cavité séreuse. Et les propriétés anatomiques de l'apport sanguin sont propices à l'apparition rapide de saignements avec irritation et dommages au mésothélium.

Diagnostic de laboratoire clinique des fluides d'épanchement

Dans une étude en laboratoire, la question de savoir si l'épanchement appartient à un transsudat ou à un exsudat est résolue, les propriétés générales (aspect macroscopique du liquide) sont évaluées : couleur, transparence, consistance.

Le liquide qui s'accumule dans les cavités séreuses sans réaction inflammatoire s'appelle un transsudat. Si le liquide s'accumule dans les tissus, nous avons affaire à un œdème ( œdème). Le transsudat peut s'accumuler dans le péricarde ( hydropéricarde), cavité abdominale ( ascite), cavité pleurale ( hydrothorax), entre les coquilles du testicule ( hydrocèle Le transsudat est généralement transparent, presque incolore ou avec une teinte jaunâtre, moins souvent légèrement trouble en raison du mélange d'épithélium desquamé, de lymphocytes, de graisse, etc. La densité ne dépasse pas 1,015 g / ml.

La formation d'un transsudat peut être causée par les facteurs suivants.

1. Une augmentation de la pression veineuse, qui se produit avec une insuffisance circulatoire, une maladie rénale, une cirrhose du foie. L'extravasation est le résultat d'une augmentation de la perméabilité des vaisseaux capillaires à la suite de lésions toxiques, d'hyperthermie et de troubles alimentaires.
2. En réduisant la quantité de protéines dans le sang, la pression osmotique des colloïdes diminue avec une diminution de l'albumine plasmatique sanguine inférieure à 25 g/l (syndrome néphrotique d'étiologies diverses, atteinte hépatique sévère, cachexie).
3. Blocage des vaisseaux lymphatiques. Dans ce cas, un œdème chyleux et des transsudats se forment.
4. Violation du métabolisme électrolytique, principalement une augmentation de la concentration de sodium (insuffisance cardiaque hémodynamique, syndrome néphrotique, cirrhose du foie).
5. Une augmentation de la production d'aldostérone.

En une phrase, la formation de transsudat peut être caractérisée comme suit : le transsudat se produit lorsque la pression osmotique hydrostatique ou colloïdale change au point que le fluide filtrant dans la cavité séreuse dépasse le volume de réabsorption.

Les caractéristiques macroscopiques des exsudats nous permettent de les rapporter aux types suivants.

1. L'exsudat séreux peut être transparent ou trouble, jaunâtre ou incolore (selon la présence de bilirubine), plus ou moins trouble (Fig. 1).

2. Exsudat séreux-purulent et purulent - liquide trouble, vert jaunâtre avec un sédiment meuble abondant. Un exsudat purulent se produit avec un empyème pleural, une péritonite, etc. (Fig. 2).

3. Exsudat putride - un liquide trouble de couleur gris-vert avec une forte odeur de putréfaction. L'exsudat putride est caractéristique de la gangrène pulmonaire et d'autres processus accompagnés d'une dégradation des tissus.

4. Exsudat hémorragique - un liquide clair ou trouble, brun rougeâtre ou brunâtre. Le nombre d'érythrocytes peut être différent: d'une petite impureté, lorsque le liquide a une couleur rose pâle, à abondant, lorsqu'il ressemble au sang total. La cause la plus fréquente d'épanchement hémorragique est un néoplasme, cependant, la nature hémorragique du liquide n'a pas une grande valeur diagnostique, car elle est également observée dans un certain nombre de maladies non tumorales (traumatisme, infarctus pulmonaire, pleurésie, diathèse hémorragique) . Dans le même temps, dans les processus malins avec une large dissémination de la tumeur le long de la membrane séreuse, il peut y avoir un épanchement séreux transparent (Fig. 3).

5. L'exsudat chyleux est un liquide trouble de couleur laiteuse, contenant en suspension les plus petites gouttes de graisse. Lorsque l'éther est ajouté, le liquide est clarifié. Un tel épanchement est dû à la pénétration de lymphe dans la cavité séreuse à partir des gros vaisseaux lymphatiques détruits, d'un abcès, d'une infiltration de vaisseaux par une tumeur, d'une filariose, d'un lymphome, etc. (Fig. 4).

6. Exsudat de type Chylus - un liquide laiteux et trouble qui apparaît à la suite de la dégradation abondante des cellules avec dégénérescence graisseuse. Comme cet exsudat contient, en plus de la graisse, un grand nombre de cellules transformées en graisse, l'ajout d'éther laisse le liquide trouble ou le clarifie légèrement. Un exsudat de type chyle est caractéristique des fluides d'épanchement, dont l'apparition est associée à une cirrhose atrophique du foie, à des néoplasmes malins, etc.

7. Exsudat de cholestérol - un liquide épais jaunâtre ou brunâtre avec une teinte nacrée avec des flocons brillants constitués de grappes de cristaux de cholestérol. Un mélange d'érythrocytes détruits peut donner à l'épanchement une teinte chocolatée. Sur les parois du tube à essai humidifié par l'effusion, des moulages de cristaux de cholestérol sous forme de minuscules étincelles sont visibles. L'épanchement encapsulé a ce caractère, qui existe depuis longtemps (parfois plusieurs années) dans la cavité séreuse. Dans certaines conditions - réabsorption d'eau et de certains composants minéraux de l'exsudat de la cavité séreuse, ainsi qu'en l'absence d'afflux de liquide dans une cavité fermée - l'exsudat de toute étiologie peut acquérir le caractère de cholestérol.

8. Exsudat muqueux - contient une quantité importante de mucine et de pseudomucine, peut survenir avec le mésothéliome, les tumeurs formant du mucus, le pseudomyxome.

9. Exsudat fibrineux - contient une quantité importante de fibrine.

Il existe également des formes mixtes d'exsudats (séreux-hémorragiques, muco-hémorragiques, séreux-fibrineux).

Dans le liquide d'épanchement natif, il est nécessaire de mener une étude de cytose. Pour ce faire, immédiatement après la ponction, le liquide est prélevé dans un tube à essai avec de l'EDTA pour empêcher sa coagulation. La cytose, ou cellularité (dans cette méthode, seul le nombre de cellules nucléées est déterminé) est réalisée selon la méthode standard dans une chambre Goryaev ou sur un analyseur hématologique en mode de numération du sang total. Pour le nombre de cellules nucléaires, la valeur WBC (globules blancs ou leucocytes) est prise en milliers de cellules par millilitre de liquide.

Une fois la cytose déterminée, le liquide peut être centrifugé pour obtenir un culot à examiner au microscope. Le surnageant, ou surnageant, peut également être testé pour les protéines, le glucose, etc. Cependant, tous les paramètres biochimiques ne peuvent pas être déterminés à partir du liquide EDTA, il est donc également recommandé de prendre simultanément le liquide dans un tube propre et sec (par exemple, centrifugeuse ou pour la recherche biochimique) et de prendre l'épanchement dans un tube avec un anticoagulant. Il s'ensuit que pour l'étude du liquide d'épanchement au laboratoire, il est nécessaire d'obtenir du matériel dans au moins deux récipients : un tube à essai avec EDTA et dans un tube à essai propre et sec, et le liquide doit y être placé immédiatement après avoir été été évacué de la cavité corporelle.

L'étude du sédiment est réalisée en laboratoire par un médecin de laboratoire ou un cytologiste. Pour précipiter l'épanchement, il doit être centrifugé à 1500 tr/min pendant 15 à 25 minutes. Selon le type d'épanchement, un sédiment différent se forme en quantité et en qualité (il peut être grisâtre, jaunâtre, sanglant, monocouche ou bicouche, parfois tricouche). Dans un épanchement séreux transparent, il peut y avoir très peu de sédiments, son caractère est à grain fin, sa couleur est blanc grisâtre. Dans un épanchement nuageux purulent ou chyleux avec un grand nombre de cellules, le sédiment est abondant, à gros grains. Dans un épanchement hémorragique avec un grand mélange d'érythrocytes, un sédiment à deux couches se forme: la couche supérieure sous la forme d'un film blanchâtre et la couche inférieure sous la forme d'une accumulation dense d'érythrocytes. Et lorsque le sédiment est divisé en 3 couches, la supérieure est plus souvent représentée par un composant de cellules détruites et de détritus. Lors de la préparation de frottis sur des lames de verre, le matériau du sédiment est prélevé sur chaque couche et au moins 2 frottis sont préparés. Avec un projet monocouche, il est recommandé de produire au moins 4 verres. Avec une faible quantité de sédiments, 1 frottis est préparé avec le maximum de matière.

Les frottis séchés à l'air à température ambiante sont fixés et colorés avec de l'éosine azur selon la méthode standard (Romanovsky-Giemsa, Pappenheim-Kryukov, Leishman, Nokht, Wright, etc.).

Diagnostic différentiel des transsudats et des exsudats

Pour différencier le transsudat de l'exsudat, plusieurs méthodes peuvent être utilisées, qui reposent sur la détermination des paramètres physiques et biochimiques du fluide. La distinction est basée sur la teneur en protéines, le type de cellule, la couleur du liquide et la gravité spécifique.

Le transsudat, contrairement à l'exsudat, est un épanchement d'origine non inflammatoire, et c'est un liquide qui s'accumule dans les cavités corporelles en raison de l'influence de facteurs systémiques régulant l'homéostasie sur la formation et la résorption du liquide. La densité du transsudat est inférieure à celle des exsudats, et est inférieure à 1,015 g/ml contre 1,015 ou plus pour les exsudats. La teneur en protéines totales dans les transsudats est inférieure à 30 g/l contre une valeur supérieure à 30 g/l dans les exsudats. Il existe un test qualitatif qui permet de vérifier le transsudat à partir de l'exsudat. C'est le fameux test de Rivalta. Il est entré dans la pratique de laboratoire il y a plus de 60 ans et a occupé une place importante dans le diagnostic des fluides d'épanchement jusqu'au développement des méthodes biochimiques et leur simplification et accessibilité, ce qui a permis de passer de la méthode qualitative du test de Rivalta aux caractéristiques quantitatives. de la teneur en protéines. Cependant, de nombreux chercheurs suggèrent maintenant d'utiliser le test Rivalta pour obtenir rapidement et assez précisément des données sur l'épanchement. Par conséquent, il est nécessaire de décrire un peu ce test.

Échantillon Rivalta

Dans un cylindre étroit avec une solution faible d'acide acétique (100 ml d'eau distillée + 1 goutte d'acide acétique glacial), le liquide exsudatif à étudier est ajouté goutte à goutte. Si cette goutte, en tombant, donne une bande de turbidité qui s'étend derrière elle, alors le liquide est un exsudat. Les transsudats ne donnent pas un test positif ou donnent une réaction de trouble à court terme faiblement positive.

« Atlas cytologique du chien et du chat » (2001) R. Raskin et D. Meyer proposent de distinguer les types de fluides séreux suivants : transsudats, transsudats modifiés et exsudats.

Le transsudat modifié est une forme de transition du transsudat à l'exsudat, contient des "valeurs intermédiaires" de concentration en protéines (entre 25 g/l et 30 g/l) et de gravité spécifique (1,015–1,018). Dans la littérature domestique moderne, le terme "transsudat modifié" n'est pas donné. Cependant, "plus de données pour le transsudat" ou "plus de données pour l'exsudat" sont autorisés sur la base des résultats des paramètres de caractéristiques différentielles.

En tableau. 1 montre les paramètres dont la définition permet de vérifier le transsudat à partir de l'exsudat.

Languette. 1. Caractéristiques différentielles des transsudats et des exsudats

	Transsudats	Exsudats
Gravité spécifique, g/ml		plus de 1.018
Protéine, g/l	moins de 30 g/l	plus de 30g/l
Coagulation	généralement absent	Arrive habituellement
Bactériologie	Stérile ou contient une microflore "de voyage"	L'examen microbiologique révèle une microflore (streptocoques, staphylocoques, pneumocoques, Escherichia coli, etc.)
cytologie des sédiments	Mésothélium, lymphocytes, parfois érythrocytes ("voyage")	Neutrophiles, lymphocytes, plasmocytes, macrophages et érythrocytes en abondance, éosinophiles, mésothélium réactif, cellules tumorales
Le rapport épanchement protéique total/sérum
LDH, relation Epanchement LDH/sérum LDH
Concentration de glucose, mmol/l	plus de 5,3 mmol/l	moins de 5,3 mmol/l
Concentration de cholestérol, mmol/l	moins de 1,6 mmol/l	plus de 1,6 mmol/l
Cytose (cellules nucléées)	moins de 1×10 9 /l	plus de 1×10 9 /l

Examen microscopique des exsudats

Description des cytogrammes des liquides exsudatifs

Sur la fig. 5 montre une micrographie du sédiment de l'épanchement réactif. Dans le sédiment, on observe des cellules mésothéliales, souvent binucléaires, avec un cytoplasme abondant intensément basophile et des noyaux hyperchromiques arrondis. Le bord du cytoplasme est irrégulier, villeux, souvent avec une transition nette de la coloration basophile à l'oxyphile brillant le long du bord de la cellule. Les noyaux contiennent de l'hétérochromatine dense et compacte, les nucléoles ne sont pas visibles. Les macrophages et les neutrophiles segmentés sont présents dans le microenvironnement. Le fond du médicament n'est pas déterminé.

Sur la fig. 6 montre une micrographie du sédiment de l'épanchement réactif. Des macrophages sont observés dans le sédiment (la figure montre 2 cellules dans un arrangement rapproché). Les cellules de forme irrégulière ont un cytoplasme "ajouré" inhomogène abondant avec de nombreuses vacuoles, phagosomes et inclusions. Les noyaux cellulaires sont de forme irrégulière et contiennent une chromatine délicatement réticulée et bouclée. Des restes de nucléoles dans les noyaux sont visibles. Il y a 2 lymphocytes dans le microenvironnement. Le fond de la préparation contient des érythrocytes.

Sur la fig. 7 montre une micrographie du sédiment de l'épanchement réactif. Dans le sédiment, on observe des cellules mésothéliales avec des signes prononcés de changements réactifs : hyperchromie du cytoplasme et des noyaux, gonflement du cytoplasme et figures mitotiques. Les macrophages du microenvironnement montrent des signes d'érythrophagocytose, souvent observés dans les hémorragies aiguës des cavités séreuses.

Sur la fig. 8 montre une micrographie du sédiment de l'épanchement réactif-inflammatoire. Le sédiment contient des macrophages, des lymphocytes et des neutrophiles segmentés avec des signes de changements dégénératifs. Les modifications dégénératives des neutrophiles sont considérées comme un indicateur de la durée de l'existence de l'inflammation et de l'activité de la réaction inflammatoire. L'inflammation "ancienne", les signes dégénératifs plus prononcés. Plus le processus est actif, plus les cellules typiques se retrouvent souvent dans le contexte de neutrophiles altérés.

Un gros problème dans l'interprétation des cytogrammes est créé par les cellules mésothéliales qui, sous l'influence de facteurs indésirables et d'irritation, sont capables d'acquérir des signes d'atypie, qui peuvent être confondus avec des signes de malignité.

Les critères de malignité (atypie) des cellules dans l'épanchement sont comparés dans le tableau. 2.

Languette. 2. Caractéristiques distinctives des cellules mésothéliales réactives et des cellules néoplasmiques malignes.

Les tumeurs malignes des membranes séreuses peuvent être primitives (mésothéliome) et secondaires, c'est-à-dire métastatique.

Métastases courantes des tumeurs malignes des séreuses :

1. pour la cavité pleurale et abdominale - cancer du sein, cancer du poumon, cancer du tractus gastro-intestinal, ovaires, testicules, lymphome;

2. pour la cavité péricardique - le plus souvent cancer du poumon et du sein.

Il est possible que des métastases de carcinome épidermoïde, de mélanome, etc. se retrouvent également dans les cavités séreuses du corps.

Sur la fig. 9 montre une micrographie du sédiment du liquide d'épanchement dans le cas de la défaite de la cavité abdominale avec des métastases de cancer glandulaire. Au centre de la photomicrographie, un complexe multicouche de cellules épithéliales atypiques est visible - une métastase de cancer du sein glandulaire. Les frontières entre les cellules sont indiscernables, le cytoplasme hyperchrome cache les noyaux. Le fond de la préparation contient des érythrocytes et des cellules inflammatoires.

Sur la fig. 10 montre une micrographie du sédiment du liquide d'épanchement dans la défaite de la cavité abdominale avec des métastases de cancer glandulaire. Au centre de la micrographie, une structure sphérique d'épithéliocytes atypiques est visualisée. Le complexe de cellules a une structure glandulaire. Les frontières des cellules voisines sont indiscernables. Les noyaux cellulaires sont caractérisés par un polymorphisme modéré. Le cytoplasme des cellules est modéré, intensément basophile.

Sur la fig. Les figures 11 et 12 montrent des microphotographies du sédiment liquidien d'épanchement en cas de lésions de la cavité pleurale avec métastases cancéreuses glandulaires. Les figures montrent des complexes de cellules polymorphes atypiques d'origine épithéliale. Les cellules contiennent de gros noyaux polymorphes avec une chromatine dispersée à grains fins et un gros nucléole. Le cytoplasme des cellules est modéré, basophile, contient une fine granularité oxyphile - signes de sécrétion.

Sur la fig. 13 montre une micrographie du sédiment du liquide d'épanchement lorsque la cavité abdominale est affectée par des métastases de cancer glandulaire. Un petit grossissement du microscope est montré - le complexe cellulaire est très grand. Et sur la fig. 14 montre une structure plus détaillée des cellules cancéreuses. Les cellules forment un complexe glandulaire - l'illumination du composant non cellulaire au centre du complexe est entourée de rangées d'épithéliocytes tumoraux atypiques.

La formation d'une conclusion sur l'appartenance des cellules tumorales trouvées au foyer principal est possible sur la base des données d'anamnèse et de la structure spécifique des cellules et de leurs complexes. Avec un foyer tumoral primaire non diagnostiqué, aucune donnée d'historique, une faible différenciation cellulaire et une atypie sévère, il est difficile de déterminer l'appartenance tissulaire des cellules tumorales.

Riz. 15 montre une cellule cancéreuse atypique géante en épanchement. L'objectif principal dans ce cas n'a pas été identifié. La cellule contient un gros noyau "bizarre", un cytoplasme basophile modéré avec des inclusions et le phénomène d'empiriopole.

Avec la dissémination du lymphome le long des membranes séreuses, de nombreuses cellules lymphoïdes atypiques pénètrent dans l'épanchement (Fig. 16). Ces cellules ont souvent le type de cellules blastiques, diffèrent par le polymorphisme et l'atypie: elles contiennent des nucléoles polymorphes, ont un caryolemme inégal avec des impressions, une chromatine inégale (Fig. 17).

Le mésothéliome crée des difficultés importantes au stade du diagnostic des dommages aux membranes séreuses par les tumeurs malignes.

Le mésothéliome est une tumeur maligne primitive des membranes séreuses. Selon les statistiques, il est plus fréquent dans la cavité pleurale que dans la cavité péritonéale. Le mésothéliome est extrêmement difficile à diagnostiquer histologiquement et encore plus cytologiquement, puisqu'il devient nécessaire de le différencier du mésothélium réactif et de presque tous les types de cancers possibles rencontrés dans les cavités séreuses.

Sur la fig. 18–19 sont des micrographies de cellules de mésothéliome dans un épanchement. Les cellules sont caractérisées par une forte atypie, un polymorphisme, une taille gigantesque. Cependant, les caractéristiques morphologiques des cellules mésothéliales sont si diverses qu'il est presque impossible pour un cytologiste de « reconnaître » le mésothéliome sans une vaste expérience pratique.

Conclusion

Sur la base de ce qui précède, on peut conclure que l'examen cytologique des exsudats des cavités séreuses est la seule méthode pour diagnostiquer la nature de l'épanchement. Une étude de routine des liquides d'épanchement pour déterminer s'ils appartiennent à l'exsudat doit être complétée par un examen cytologique du sédiment.

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